新冠檢測類型大不同

從新冠病毒爆發之初，到現今本澳疫情趨於穩定，新冠病毒檢測成了功臣之一。透過針對不同人群、採集方式和樣本數量，新冠檢測能夠幫助醫護人員排查出確診新冠的患者，並在療程結束後檢驗病患是否痊癒。

隨着疫情管控政策的發展，新冠檢測和採集的方式種類也越來越多，平常在新聞報道中都提及“單採”、“混採”、“單檢”和“混檢”，很多民眾都會對於它們產生疑惑。究竟這些方式有何異同？哪一個適合一般民眾進行檢驗？準確性又有甚麼差別呢？

首先概述一下整個新冠病毒檢測流程，主要有兩部分，一個是採樣，另一個是檢測。採樣形式可分為“單採”和“混採”。顧名思義，單採就是指採集單個樣本，強調採集的過程中，一個人佔用一個採集管，一支拭子配用一個採集管。那邊廂，“混採”與單採不同，混採是在採集過程中，混合多個樣本。在醫護人員將拭子放入鼻腔或咽喉後，接下來多個受試者的拭子會放入同一個採集管中。混採又跟據放入同一採集管的拭子數分為五合一混採、十合一混採和二十合一混採。混採的過程中，因為各樣本未經稀釋，所以檢測出病毒的準確度是同等的。若該樣本呈陰性，即代表混採的十個受試者全數陰性。若樣本呈陽性，則衛生部門會召回十位居民再次進行單採，以確定陽性個案。國務院救治組為對混採方法有統一標準，於二○二○年八月和二○二二年一月分別發佈《關於印發新冠病毒核酸十合一混採檢測技術規範的通知》和《關於印發新冠病毒核酸二十合一混採檢測技術規範的通知》，內容指出，根據單採和混採，需要不同份量的保存液。一般而言，單採保存液為三毫升，混採保存液為六毫升。與此同時，根據《澳門特別行政區應對大規模新冠肺炎疫情應急處置預案（第一版）》指出，本澳一般以十合一混採方式進行新冠檢測。

至於檢測形式，總括可以理解為經過樣本前處理後，樣本進入即時聚合酶連鎖反應（Real-time PCR，簡稱RT-PCR）進行檢測的過程。一般分為“單檢”和“混檢”。前者將採集管會作為一個獨立樣本進行檢測，依據檢測試劑盒上要求的份量將原始樣本加入試劑中進行核酸提取。單檢是疫情初期針對高風險人群、隔離人士和新冠感染患者病程監測的檢測方式。那邊廂，後者所配合採集方式與單檢相同，都是以一個人一個採集管為單位，但在放入試劑盒前會進行稀釋，多個人佔用一個檢測通道，核酸提取完畢後再進行擴增。但混檢是在混採還未出台前的次要方案，現在已經基本不會使用了。

那麼，檢測數值又有甚麼影響？由於“單採”和“單檢”沒有涉及到保存液的稀釋，靈敏度相同；“混採”則由於保存液稀釋一倍，驟眼看靈敏度相差一半，但對於平時新聞報道所提及CT值（循環閥值）而言，只增加一個單位（理想情況）。但如果十採一過程，有兩個陽性樣本，則靈敏度與“單採”和“單檢”一樣。至於“混檢”方面，由於進入RT-PCR之前，檢測人員需要按試劑盒要求，將每支保存液稀釋到特定體積。以十合一混檢為例，每支保存液都要稀釋十倍後上機，若其中一個為陽性樣本，則檢出的CT值（理想值）會比單採單檢時增加約三單位。所以不管混採或混檢，一旦發現陽性，衛生當局都會對混合樣本的受試者進行單獨隔離，並進行單採單檢。

檢測過程中會涉及人員、儀器、物料、方法和環境，當確保到採樣人員採樣到位、檢測儀器順利操作。檢驗試劑的靈敏度越高，檢測方法無誤和環境沒有污染下，單採和混採都能夠檢測出病毒，其準確程度大致相同。需要注意的是，想要提高新冠檢測的準確度，更重要的是檢驗試劑的靈敏度（靈敏度越高，就能夠檢測出病毒濃度越低的樣本），同時還有檢驗前的樣本前處理等各種因素。因此，透過混採達到多次篩查，更可以提高準確性。

培正基因工程小組組長 劉千悅